肠沙门氏菌肠亚种鼠伤寒血清型Salmonella enterica subsp/ enterica serovar TyphimuriumCICC 22956（GB 4789.28-2013）
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Lentibacillus populi
DSM 101738 |
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Magnaporthe sp/CICC 2533
CICC 2533 | 见证书
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Septoria sp/CICC 2570
CICC 2570 | 见证书
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Septoria sp/CICC 2571
CICC 2571 | 见证书
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Rhizopus delemarCICC 3129
CICC 3129 | 见证书
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Rhizopus delemarCICC 3162
CICC 3162 | 见证书
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Lentibacillus populi
DSM 101738 |
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Magnaporthe sp/CICC 2533
CICC 2533 | 见证书
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Septoria sp/CICC 2570
CICC 2570 | 见证书
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Septoria sp/CICC 2571
CICC 2571 | 见证书
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Rhizopus delemarCICC 3129
CICC 3129 | 见证书
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手机版：肠沙门氏菌肠亚种鼠伤寒血清型Salmonella enterica subsp/ enterica serovar TyphimuriumCICC 22956
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国家标准：GB 15193.4-2003 鼠伤寒沙门氏菌/哺乳动物微粒体酶试验
适用于食品、化学品及环境样品的致突变性检测，用于评估物质对DNA的潜在损伤能力[1][3]。
基于Ames试验原理，使用鼠伤寒沙门氏菌组氨酸缺陷型菌株，通过回复突变率判断致突变性[1]。
检出限为1 CFU/平板，定量限通过标准菌株回复突变率计算（通常≥2倍阴性对照）[1]。
需包含阳性对照（如2-氨基芴）、阴性对照及S9代谢活化系统验证实验有效性[1]。
1. 菌株预培养；2. 顶层琼脂混合；3. 代谢活化系统添加；4. 平板孵育（37℃, 48h）[1]。
需定期验证菌株遗传标志（组氨酸需求、脂多糖屏障缺陷等），S9组分活性需符合国际参比标准[1]。
行业标准：CJ/T 150-2001 城市供水致突变物的测定
针对城市供水系统中化学污染物的致突变性检测，包括水源水、出厂水及管网水[3]。
采用浓缩水样与鼠伤寒沙门氏菌TA98/TA100菌株进行平板掺入法试验[3]。
最低可检测0.5L水样浓缩物的致突变活性，定量通过剂量-效应曲线分析[3]。
每批次需包含空白浓缩样、阳性对照及平行样（平行偏差≤15%）[3]。
1. 水样XAD树脂吸附；2. 丙酮洗脱浓缩；3. 菌株暴露；4. 结果判定（回复突变菌落数≥2倍阴性对照为阳性）[3]。
需控制水样浓缩过程中的温度（≤40℃）以防止目标物降解[3]。
团体标准：T/SDAA 0067-2023 鼠伤寒沙门氏菌/肠炎沙门氏菌检测技术
适用于畜禽产品、饲料及环境中鼠伤寒沙门氏菌和肠炎沙门氏菌的快速检测[6]。
双重PCR技术，同步检测invA基因（沙门氏菌属）和STM4497基因（鼠伤寒血清型特异性）[6]。
纯培养物检测限为10² CFU/mL，实际样品检测限为10³ CFU/g[6]。
需包含阳性对照（ATCC 13311）、阴性对照及内参（16S rRNA基因）[6]。
1. 样品增菌（BPW, 37℃ 18h）；2. DNA提取；3. PCR扩增（退火温度58℃）；4. 电泳分析[6]。
需验证引物特异性，排除与肠炎沙门氏菌、猪霍乱沙门氏菌的交叉反应[6]。
行业标准：HY/T 153-2013 海水沉积物致突变性检测
海洋环境监测中海水及沉积物提取物的致突变性评估[3]。
使用鼠伤寒沙门氏菌TA98菌株，通过预培养法进行间接致突变物检测[3]。
沉积物样品检测限为0.1g/kg（以芘当量计）[3]。
需进行基质加标回收实验（回收率60%-120%）[3]。
1. 样品索氏提取；2. 提取物DMSO溶解；3. 平板掺入法试验；4. 数据归一化（以S9蛋白含量为基准）[3]。
需控制沉积物有机质含量对检测结果的干扰（建议TOC＜5%）[3]。
以上信息仅供参考，请以相应标准的原文为准！