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肠沙门氏菌肠亚种鼠伤寒血清型 Salmonella enterica subsp enterica serovar Typhimurium CICC 25045 Salmonella enterica subsp enterica serovar Typhimurium
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肠沙门氏菌肠亚种鼠伤寒血清型 Salmonella enterica subsp enterica serovar Typhimurium CICC 25045 Salmonella enterica subsp enterica serovar Typhimurium

CICC 25045
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肠沙门氏菌肠亚种鼠伤寒血清型 Salmonella enterica subsp enterica serovar Typhimurium CICC 25045介绍：

  • 平台资源号：1511C0005000013231
  • 菌株保藏编号：CICC 25045
  • 中文名称：肠沙门氏菌肠亚种鼠伤寒血清型
  • 拉丁名称：Salmonella enterica subsp. enterica serovar Typhimurium
  • 模式菌株： 否
  • 其它保藏中心编号：= CMCC (B) 50976
  • 来源历史：←中国食品药品检定研究院←湖北
  • 收藏时间：2020-12-21
  • 原始编号：FC2200
  • 特征特性：菌体短杆状，单个或成对排列，革兰氏阴性
  • 参考用途：GB 4789.28-2024《培养基和试剂的质量要求》标准菌株，《公共场所卫生检验方法》标准菌株
  • 生物危害程度：三类
  • 致病对象：无
  • 分离基物：食品

说明书下载： 菌种说明书    打管说明书
肠沙门氏菌肠亚种鼠伤寒血清型 Salmonella enterica subsp enterica serovar Typhimurium CICC 25045培养条件：

  • 培养基：0847 胰蛋白胨大豆琼脂（TSA）
  • 胰蛋白胨15.0 g
    大豆胨5.0 g
    NaCl 5.0 g
    琼脂 15.0 g
    蒸馏水1000.0 mL
    pH7.3

    以上成分121℃，灭菌15 min。液体培养基不添加琼脂。推荐使用成品培养基。
  • 培养温度：36 ℃
  • 需氧类型：好氧
肠沙门氏菌肠亚种鼠伤寒血清型 Salmonella enterica subsp enterica serovar Typhimurium CICC 25045参考文献：


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    手机版：肠沙门氏菌肠亚种鼠伤寒血清型 Salmonella enterica subsp enterica serovar Typhimurium CICC 25045

    本公司销售的所有产品仅供实验科研使用，不用于人体及临床诊断。

    GB 4789.28-2024相关产品
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    鼠伤寒沙门氏菌/哺乳动物微粒体酶试验
    适用范围适用于食品、药品及化学品中致突变物的检测，通过基因突变试验评估潜在遗传毒性[1]。
    核心检测方法采用鼠伤寒沙门氏菌回复突变试验（Ames试验），结合哺乳动物微粒体酶（S9）模拟代谢活化系统[1]。
    检出限与定量限未明确具体数值，依赖菌株自发回变率与诱导回变率比值判断结果[1]。
    质控样品要求需设置阴性对照（溶剂对照）和阳性对照（已知致突变物），验证菌株敏感性与S9活性[1]。
    关键实验步骤包括菌株活化、代谢活化系统制备、样品与菌液共孵育、结果观察（回变菌落计数）[1]。
    特别说明需定期验证菌株基因型及生物学特性，实验环境需符合生物安全二级标准[1]。
    T/SDAA 0067-2023 鼠伤寒沙门氏菌/肠炎沙门氏菌检测技术
    适用范围针对动物源性食品及养殖环境中的鼠伤寒沙门氏菌和肠炎沙门氏菌检测[1][8]。
    核心检测方法基于双重PCR技术，特异性扩增菌株靶基因（如invA和sefA）[1][8]。
    检出限与定量限检出限为102 CFU/mL，定量限需通过标准曲线确定[8]。
    质控样品要求需包含阳性对照（标准菌株DNA）和阴性对照（无菌水或非目标菌DNA）[8]。
    关键实验步骤样品前处理、DNA提取、PCR扩增、凝胶电泳分析及结果判读[8]。
    特别说明引物设计需避开血清型间交叉反应区域，避免假阳性结果[8]。
    城市供水致突变物测定
    适用范围用于城市供水及水源中致突变活性的筛查，评估水质安全性[1]。
    核心检测方法参照Ames试验原理，结合浓缩水样与鼠伤寒沙门氏菌TA98/TA100菌株[1]。
    检出限与定量限以回变菌落数≥2倍阴性对照为阳性判定阈值[1]。
    质控样品要求需测试标准致突变物（如2-AF）作为阳性对照，确保系统有效性[1]。
    关键实验步骤水样浓缩、代谢活化系统添加、平板接种、培养及菌落计数[1]。
    特别说明水样需预处理去除余氯，避免干扰菌株活性[1]。
    HY/T 153-2013 海水及沉积物致突变性测定
    适用范围适用于海洋环境样品中化学污染物的遗传毒性评价[1]。
    核心检测方法采用鼠伤寒沙门氏菌/哺乳动物微粒体酶试验，结合固相萃取富集技术[1]。
    检出限与定量限沉积物样品检出限为0.1 μg/kg（以苯并[a]芘计）[1]。
    质控样品要求需添加基质加标样品，验证提取与检测效率[1]。
    关键实验步骤样品萃取、浓缩、代谢活化、平板培养及数据统计分析[1]。
    特别说明需考虑盐度对菌株活性的影响，必要时调整渗透压[1]。
    GBZ/T 240.8-2011 化学品毒理学评价
    适用范围用于工业化学品遗传毒性的初步筛查，职业暴露风险评估[1]。
    核心检测方法鼠伤寒沙门氏菌回复突变试验（Ames试验），分加S9与不加S9两组[1]。
    检出限与定量限以剂量依赖性回变菌落数增加为阳性判断依据[1]。
    质控样品要求需包含溶剂对照、阳性对照及空白对照，确保数据可靠性[1]。
    关键实验步骤菌株预培养、受试物浓度梯度设置、平板掺入法操作[1]。
    特别说明高毒性样品需调整浓度范围，避免抑菌作用干扰结果[1]。
    ISO 6579-1:2017 食物链微生物学
    适用范围全球食品及饲料中沙门氏菌属的定性检测，覆盖所有血清型[5][6]。
    核心检测方法基于选择性增菌（BPW+RVS培养基）、分离培养（XLD/HE琼脂）及生化鉴定[6]。
    检出限与定量限方法灵敏度为1-10 CFU/25g样品，需验证低菌量检出能力[6]。
    质控样品要求每批次需包含阳性对照（鼠伤寒沙门氏菌）和阴性对照（大肠杆菌）[6]。
    关键实验步骤样品均质、选择性增菌、平板划线、典型菌落筛选及血清学确认[6]。
    特别说明部分非典型沙门氏菌（如亚利桑那菌）需额外生化试验区分[6]。

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