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大肠埃希氏菌25123工作菌株  _
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大肠埃希氏菌25123工作菌株

CICC D0011 {{goodObj.price > 0 ? '¥' + goodObj.price : '咨询'}} ¥{{goodObj.sell_price || 0}} 咨询 1套/盒(含1支菌粉+1支培养液) {{goodObj.date}} CICC {{item.norm}} ≥1 × 10^6 CFU/支 {{inventory}}
大肠埃希氏菌25123工作菌株 介绍:
  • 产品编号:CICC D0011
  • 中文名称:大肠埃希氏菌25123工作菌株
  • 参考值:≥1 × 10^6 CFU/支
  • 特性:定性
  • 具体用途:噬菌体Phi X174宿主菌,配套A0250使用
  • 规格:1套/盒(含1支菌粉+1支培养液)
  • 单位:盒
  • 保存温度:2℃~8℃
  • 总效期:12个月
  • 适用标准:YY/T 0689-2008《血液和体液防护装备 防护服材料抗血液传播病原体穿透性能测试 Phi-X174噬菌体试验方法》;YY/T 1497-2016 医用防护口罩材料病毒过滤效率评价测试方法Phi-X174菌体测试方法;YY/T1777-2021男用避孕套合成材料避孕套技术要求与试验方法

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本公司销售的所有产品仅供实验科研使用,不用于人体及临床诊断。

食品安全国家标准 食品微生物学检验 致泻大肠埃希氏菌检验
适用范围
本标准适用于食品中致泻大肠埃希氏菌的检验,包括EPEC(肠道致病性)、EIEC(肠道侵袭性)等五种致病型[4]。
核心检测方法
采用选择性培养基分离结合PCR技术,包括增菌培养、生化鉴定及血清学试验,PCR仪用于特异性基因片段扩增[4]。
检出限与定量限
检测灵敏度为1 CFU/25g,定量方法依赖平板计数法与实时荧光定量PCR联合判定[4]。
质控样品要求
需使用标准菌株(如ATCC 35150)作为阳性对照,阴性对照需排除交叉污染,每批次实验需包含空白对照[4]。
关键实验步骤
1. 样品预处理与选择性增菌(36℃±1℃, 18-24h);
2. 分离培养(MAC/EMB琼脂);
3. 生化鉴定(吲哚、MR-VP试验);
4. PCR检测毒力基因(stx1/stx2等)[4]。
特别说明
需区分不同致病型的毒力因子,如EHEC需检测志贺毒素基因,实验人员需具备生物安全二级防护资质[4]。
GB 4789.38—xxxx 食品安全国家标准 食品微生物学检验 大肠埃希氏菌计数(征求意见稿)
适用范围
适用于食品及其加工环境中大肠埃希氏菌的定量检测,包括生鲜食品、预包装食品及加工器具表面样品[1]。
核心检测方法
基于平板计数法,采用ChromID™大肠杆菌显色培养基,结合β-葡萄糖醛酸酶活性检测[1]。
检出限与定量限
最低检出限为1 CFU/g(mL),定量范围10-300 CFU/平板,超出范围需梯度稀释[1]。
质控样品要求
每批次需包含标准菌株ATCC 25922作为阳性对照,并设置基质加标回收实验(回收率≥70%)[1]。
关键实验步骤
1. 样品均质与十倍梯度稀释;
2. 选择性平板接种(37℃±1℃, 24h±2h);
3. 典型菌落计数(蓝色/绿色菌落);
4. 确证试验(氧化酶阴性、IMViC++--)[1]。
特别说明
显色培养基需进行适应性验证,冷冻样品需在45℃内快速解冻,检测报告需注明未经验证的方法学偏差[1]。
进出口食品中五种致泻大肠埃希氏菌快速检测方法 多重PCR法
适用范围
针对进出口食品中EHEC、ETEC、EPEC、EIEC、EAEC五类致泻菌的快速筛查,检测周期≤8h[2][4]。
核心检测方法
多重PCR技术同步检测lt/stx/eae等毒力基因,扩增体系包含内标控制,电泳判定需出现特异性条带[2][4]。
检出限与定量限
纯菌DNA检测限为10 pg/μL,食品基质中灵敏度达10^3 CFU/g[2][4]。
质控样品要求
每批次需包含非目标菌(如沙门氏菌)作为特异性对照,扩增内标需显示正常条带排除抑制[2][4]。
关键实验步骤
1. 快速DNA提取(煮沸法);
2. 多重PCR扩增(95℃预变性5min,35循环);
3. 琼脂糖凝胶电泳分析(1.5%凝胶,100V 40min)[2][4]。
特别说明
需注意引物二聚体干扰,阳性结果需经测序确认,方法不适用于死菌检测[2][4]。

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