大肠杆菌菌片8099(玻璃载体)(含菌量: 1x106一5x106cfu/片)/用于汽雾或超低容量喷雾的消毒方式的消毒效果评价指标微生物(WS/T 683)
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胰酪大豆胨液体培养基(TSB)(中国药典)/一种通用的营养培养基,用于各种微生物的培养
HB4114-19 | 见证书
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沙氏葡萄糖液体培养基(中国药典)/用于霉菌和酵母菌的增菌培养
HB0253-71 | 见证书
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胰酪大豆胨液体培养基(TSB)(中国药典)/一种通用的营养培养基,用于各种微生物的培养
HB4114-19 | 见证书
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冻干兔血浆/用于金黄色葡萄球菌的血浆凝固酶试验(GB、SN标准)
HB4117-4 | 见证书
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沙氏葡萄糖琼脂(含氯霉素)(EP标准)/用于霉菌和酵母菌的分离培养
HB8407-2 | 见证书
用途:用于汽雾或超低容量喷雾的消毒方式的消毒效果评价指标微生物。
菌片菌量的确定:
用无菌镊子取一片菌片,投入到5mL无菌生理盐水管中,用电动混匀器振荡混匀20秒,将菌洗下形成菌悬液,计为0管。从0管吸取500μL菌液至4.5mL无菌生理盐水管中,用电动混匀器振荡混匀20秒,得到-1管,从-1管吸取500μL菌液至4.5mL无菌生理盐水管中,用电动混匀器振荡荡混匀20秒,得到-2管。从-2管吸取500μL菌液至4.5mL无菌生理盐水管中,用电动混匀器震荡混合20秒,得到-3管。从-3管中吸取100μL菌液涂布TSA后培养计数。(如果采用倾注法计数应进一步稀释至-4梯度管,然后吸取1mL菌液至无菌平皿内,取40-45℃TSA培养基倾注平板,每平皿倾注15-20mL,充分混匀自然凝固后培养计数。)平板菌落数在20-100CFU,则说明原0管中洗脱下来的菌量在(1-5)*106CFU,即每片菌片有效回收菌量在(1-5)*106CFU/片。详细操作步骤见下图:
产品简介 根据《疫情期间现场消毒评价标准WS/T 774-2021》中对消毒因子的抗力选择指示微生物大肠杆菌(8099)制作而成,用于常温或低温环境现场消毒效果评价。化学消毒时,对消毒因子的抗力与标准要求相当、易于培养且符合实验室生物安全和《WS/T 683》标准的要求。一般情况下,可选择布片载体,当使用气雾或超低容量喷雾等消毒方式时,应选择金属片载体进行评定。
使用方法 1.消毒前,按照布点要求,将菌片放置于消毒评价现场; 2.消毒达到作用时间后,用无菌镊子将菌片移入装有5.0 mL 相应中和剂试管中,在手心振打80 次或用混匀器混匀,中和10 min。 3.设立阳性对照组。低温现场消毒时,阳性对照组与试验组一起放入相应低温环境,达到相同低温后,放入稀释液中。 4.将采样管在混匀器上振荡20 s 或在手心振打80 次,吸取1.0 mL 待检样品接种于无菌平皿,每一个样本平行接种2 个平皿,并按标准要求使用相应的培养基接种培养。 5.计数菌落数,计算杀灭率。
菌片具体使用方法:
菌片使用中注意事项:
1、做消毒剂杀菌测试时,应将菌面朝上(布片无需分辨正反面)。
2、用镊子夹取菌片时,先用酒精棉擦拭镊子或用酒精灯灼烧镊子前端,待冷却后再夹取菌片,注意不要触碰到中心的菌,以免菌沾在镊子上造成菌量损失。
3、振荡稀释时需使用电动混合器,且需调整至最大振荡力度,每次均需振荡20S,确保菌片上的菌可以有效洗脱并混匀。
4、涂布或倾注法计数时需保证菌液被完全涂开或混匀,避免菌落连在一起难以计数。
保存条件:
-18℃以下冷冻保存,有效期6个月。
说明书下载:
以上信息仅供参考,请以实物批次为准!
GB/T 38502-2020《消毒剂实验室杀菌效果检验方法》解读
2. 载体浸泡法:使用玻璃/布片载体,作用时间分0.5倍、1倍、1.5倍说明书规定时间[2][4]
• 载体法:杀灭对数值≥3.00
• 对照组微生物数需在1×10⁶~5×10⁶ CFU/片范围内[2][4]
2. 含菌量:1×10⁶~5×10⁶ CFU/片
3. 保存条件:-20℃保存,有效期≤6个月[4]
2. 采样处理:振打80次后中和10分钟
3. 培养条件:37℃需氧培养18-24小时
4. 低温试验:阳性对照需同步预冷处理[4]
2. 低温消毒评价:菌片需在低温环境平衡30分钟后再使用
3. 结果判定:所有试验批次均需达标方为合格[2][4]
以上信息仅供参考,请以相应标准的原文为准!