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创伤弧菌Vibrio vulnificusCICC 21615(GB 4789.28-2013/GB 4789.44-2020)_
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创伤弧菌Vibrio vulnificusCICC 21615(GB 4789.28-2013/GB 4789.44-2020)

CICC 21615 {{goodObj.price > 0 ? '¥' + goodObj.price : '咨询'}} ¥{{goodObj.sell_price || 0}} 咨询 见证书 {{goodObj.date}} CICC {{item.norm}} 见证书 {{inventory}}

创伤弧菌Vibrio vulnificusCICC 21615介绍:

  • 平台资源号:1511C0005000006582
  • 菌株保藏编号:CICC 21615
  • 中文名称:创伤弧菌
  • 拉丁名称:
  • 模式菌株: 是
  • 其它保藏中心编号:=CGMCC 1.1758=ATCC 27562 =JCM 3725=CCRC 12905
  • 来源历史:←中国检验检疫科学研究院(12306) ←CGMCC
  • 收藏时间:2008-01-05
  • 特征特性:G-杆菌,氧化酶阳性;赖氨酸脱羧酶、鸟氨酸脱羧酶均阳性,精氨酸双水解酶阴性,吲哚阳性,尿素酶、伏-普实验均阴性;发酵葡萄糖产酸不产气;不发酵阿拉伯糖、蔗糖、水杨苷。兼性厌氧,最适pH7.4~7.6。
  • 参考用途:研究、质量控制,GB 4789.28-2013《培养基和试剂的质量要求》标准菌株,GB 4789.44-2020《创伤弧菌检验》阳性对照菌株。
  • 生物危害程度:三类
  • 致病对象:人畜共患
  • 致病名称:菌血症、伤口感染

说明书下载: 菌种说明书    打管说明书
创伤弧菌Vibrio vulnificusCICC 21615培养条件:

  • 培养基:0444 细菌用海洋琼脂培养基 Bacto marine agar ( 2216)
  • 酵母浸粉 1.0 g
    蛋白胨 5.0 g
    柠檬酸铁 0.1 g
    NaCl 19.45 g
    MgCl2 5.9 g
    KCl 0.55 g
    Na2SO4 3.24 g
    CaCl2 1.8 g
    Na2CO3 0.16 g
    KBr 0.08 g
    SrCl2 34.0 mg
    H3BO3 22.0 mg
    NaSiO3 4.0 mg
    NaF 2.4 mg
    NH4NO3 1.6 mg
    Na2HPO4 8.0 mg
    琼脂 15.0 g
    蒸馏水 1000.0 mL
    pH 7.6

    以上成分121℃,灭菌15 min。液体培养基不加琼脂。推荐使用成品培养基。
  • 其他培养条件:ATCC 27562
  • 培养温度:30 ℃
  • 需氧类型:好氧
创伤弧菌Vibrio vulnificusCICC 21615参考文献:

  1. M. Y. Yi, L. Ling, S. B. Neogi, et al. Real time loop-mediated isothermal amplification using a portable fluorescence scanner for rapid and simple detection of Vibrio parahaemolyticus[J]. Food Control, 2014, 41:91-95.
  2. N. Duan, Y. L. Yan, S. J. Wu, et al. Vibrio parahaemolyticus detection aptasensor using surface-enhancedRaman scattering[J]. Food Control, 2016, 63:122-127
  3. 陆海霞, 孙玲莉, 陈迪等. 水产品源创伤弧菌腹腔感染小鼠的损伤作用及靶器官分析[J]. 中国食品学报, 2015, 15(4):30-37
  4. 贺生芳, 郭澍强, 谈静惠, 等. 志贺氏菌可视浊度/ 荧光环介导等温扩增方法的建立[J]. 中国动物检疫,2019,36(05):93-98.

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一、GB 4789.44-2020 食品安全国家标准 食品微生物学检验 创伤弧菌检验

适用范围适用于鱼、虾、蟹、贝类等水产品中创伤弧菌的检验[1][3]。
核心检测方法基于微生物培养法结合PCR技术,包括样品前处理、选择性增菌、分离培养及分子生物学鉴定[1][3]。
检出限与定量限未明确具体数值,需根据样品类型和检测流程优化。
质控样品要求需使用标准菌株(如ATCC 27562)进行实验过程验证,确保培养温度(36℃±1℃)和试剂有效性[1][3]。
关键实验步骤1. 样品均质化处理;2. 碱性蛋白胨水增菌;3. TCBS琼脂平板分离;4. 生化试验及PCR确认[1][3]。
特别说明本标准为强制性检测方法标准,不涉及创伤弧菌的限量要求,需结合GB 29921等限量标准使用[1][3][4]。

二、SN/T 2564-2010 水产品中致病性弧菌检测 MPCR-DHPLC法

适用范围适用于水产品中创伤弧菌、副溶血性弧菌等5种致病性弧菌的快速检测[5][6]。
核心检测方法多重PCR(MPCR)结合变性高效液相色谱(DHPLC)技术,实现多种弧菌同步鉴别[5][6]。
检出限与定量限检测灵敏度为10²~10³ CFU/g,定量需结合标准曲线。
质控样品要求需使用阳性对照菌株验证引物特异性,并确保PCR抑制物去除效果。
关键实验步骤1. 基因组DNA提取;2. MPCR扩增靶基因;3. DHPLC分析扩增产物;4. 峰型比对判定结果[5][6]。
特别说明该方法适用于高通量筛查,但需配备专业仪器,实验人员需经专业培训[5][6]。

三、SN/T 5364.7-2021 出口食品中致病菌检测方法 微滴式数字PCR法

适用范围适用于出口食品中创伤弧菌等高特异性病原体的绝对定量检测[7][10]。
核心检测方法基于微滴式数字PCR(ddPCR)技术,通过核酸分区扩增实现精确定量[7][10]。
检出限与定量限检测限低至1~10拷贝/反应,定量范围宽于实时荧光PCR。
质控样品要求需设置阴性对照、阳性对照和空白对照,并监控微滴生成质量。
关键实验步骤1. 样品DNA提取;2. 微滴制备与PCR扩增;3. 微滴信号读取;4. 数据分析与阈值判定[7][10]。
特别说明该方法适用于复杂基质样品,但设备成本较高,需严格防止交叉污染[7][10]。

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