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缓冲蛋白胨水(BPW)(颗粒)(袋装)/用于阪崎杆菌前增菌培养(GB标准)_
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缓冲蛋白胨水(BPW)(颗粒)(袋装)/用于阪崎杆菌前增菌培养(GB标准)

HBKD4084 {{goodObj.price > 0 ? '¥' + goodObj.price : '咨询'}} ¥{{goodObj.sell_price || 0}} 咨询 300ml/袋*10 {{inventory}} {{goodObj.date}} hopebio {{item.norm}} 见证书

缓冲蛋白胨水(BPW)(颗粒)(袋装)介绍:

用途:用于沙门氏菌前增菌培养,亦可用于李氏菌前增菌培养。

成分(g/L)

蛋白胨10.0
氯化钠5.0
磷酸氢二钠(12个结晶水)9.0
磷酸二氢钾1.5
pH7.2 ± 0.225
检验原理

蛋白胨提供碳源和氮源满足细菌生长的需求;氯化钠可维持均衡的渗透压;磷酸二氢钾和磷酸氢二钠是缓冲剂。 

缓冲蛋白胨水(颗粒)袋装的微生物灵敏度试验:

按标签用法制备培养基,接种以下质控菌株,放置36±1℃需氧培养8小时。

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GB 4789.40-2024 食品安全国家标准 食品微生物学检验 克罗诺杆菌检验

适用范围
适用于婴幼儿配方食品、乳及乳制品等原料中克罗诺杆菌的检验[1]。
核心检测方法
1. 前增菌:使用缓冲蛋白胨水(BPW)在36℃±1℃培养18-24小时;
2. 选择性增菌:转接至改良月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤(mLST-V)中,41.5℃±1℃培养24小时[1]。
检出限与定量限
未明确具体数值,但方法灵敏度满足食品中克罗诺杆菌痕量检测需求[1]。
质控样品要求
需使用阳性对照菌株(如克罗诺杆菌标准菌株)验证培养基有效性,阴性对照需无菌生长[1]。
关键实验步骤
1. 样品处理:25g样品与225mL BPW均质;
2. 离心分离:≥12000r/min离心提取DNA;
3. 培养条件:恒温培养箱需严格校准温度误差≤1℃[1]。
特别说明
BPW需高压灭菌后使用,开封后需密封防潮,避免成分失效影响增菌效果[1]。

GB 4789.41-2016 食品安全国家标准 食品微生物学检验 肠杆菌科检验

适用范围
第一法适用于肠杆菌科含量≥100 CFU/g的食品,第二法适用于含量<100 CFU/g的食品[2]。
核心检测方法
1. 前增菌:使用BPW在36℃±1℃培养4小时(第一法)或18-24小时(第二法);
2. 显色培养:转接至VRBG琼脂平板进行选择性分离[2]。
检出限与定量限
第一法检出限10 CFU/g,定量限100 CFU/g;第二法检出限1 CFU/g[2]。
质控样品要求
需定期使用肠杆菌科标准菌株(如阴沟肠杆菌)验证培养基选择性,质控频率≥5%[2]。
关键实验步骤
1. 均质时间:样品与BPW混合需充分均质2分钟;
2. 稀释梯度:第二法需进行10倍系列稀释;
3. 培养观察:VRBG平板需培养24小时后判读典型菌落[2]。
特别说明
BPW配制后pH需严格控制在7.2±0.2,超出范围需重新配制[2]。
[1] GB 4789.40-2024 食品安全国家标准 食品微生物学检验 克罗诺杆菌检验 [2] GB 4789.41-2016 食品安全国家标准 食品微生物学检验 肠杆菌科检验

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