牛津琼脂(OXA)基础/用于李斯特氏菌的分离培养（ISO、SN标准）
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用途：用于李斯特氏菌的分离培养（ISO、SN标准）。
添加剂：每瓶需配套添加9盒 HB4171-1 OXA添加剂使用，每支添加于100ml牛津琼脂(OXA)基础中。
成分（g/L）
检验原理：特殊蛋白胨和可溶性淀粉提供碳氮源、维生素和生长因子；氯化钠维持均衡的渗透压；李斯特氏菌水解七叶苷与铁离子反应形成黑色6,7-二羟基香豆素；氯化锂和其它的抗生素能抑制革兰氏阴性菌和大多数革兰氏阳性菌；琼脂是培养基的凝固剂。
用法：
称取本品5.85g，加热溶解于100ml蒸馏水中，121℃高压灭菌15分钟，冷至50℃时，加入1支牛津琼脂抑菌剂【多粘菌素E（2mg）、放线菌酮（40mg）、吖啶黄素（0.5mg）、头孢双硫唑甲氧（0.2mg）、磷霉素（1mg）】，混匀，倾入无菌平皿，备用。
注：培养基中含少量淀粉、柠檬酸铁铵，灭菌后可能出现微量沉淀。
单增李斯特氏菌在牛津琼脂(OXA)基础上的生长特征：
黑色菌落，有黑色环
牛津琼脂（OXA)基础微生物灵敏度试验:
按标签用法制备培养基，接种以下质控菌株，放置35±1℃需氧培养24-48小时。 注：回收率计算时，用TSA琼脂做对照培养基。
以上信息仅供参考，请以实物批次为准！
本公司销售的所有产品仅供实验科研使用，不用于人体及临床诊断。
适用于食品、水质及环境样本中单核细胞增生李斯特氏菌的选择性分离检测，特别针对复杂基质样本中目标菌的富集培养[1][6]。
基于选择性抑制原理：
• 氯化锂抑制革兰氏阴性菌
• 多粘菌素E、放线菌酮等抗生素抑制非目标革兰氏阳性菌
• 七叶苷水解反应作为特异性生化指示（黑色菌落）[2][6]
• 最低检出限：10 CFU/g（食品基质）
• 定量检测范围：10²-10⁷ CFU/mL（需配套增菌步骤）[6]
• 阳性对照：单核细胞增生李斯特氏菌ATCC 19115
• 阴性对照：金黄色葡萄球菌ATCC 25923
• 回收率要求：≥70%（与TSA对照培养基比较）[6]
① 基础培养基制备：56.5g/L蒸馏水溶解，121℃灭菌15分钟[2]
② 添加剂添加：冷却至50℃时加入多粘菌素E(2mg/L)、放线菌酮(40mg/L)、吖啶黄素(0.5mg/L)[6]
③ 倾注平皿：厚度≥3mm，凝固后4℃保存≤7天[1]
• 培养基pH严格控制在7.0±0.2（25℃）
• 避免过度加热导致的淀粉糊化（溶解温度≤80℃）
• 含亚抑制剂量的头孢双硫唑甲氧（0.2mg/L）增强选择性[6]
以上信息仅供参考，请以相应标准的原文为准！